<<
>>

  Пчела медоносная, ApismelliferaL.

  Медоносные пчелы, как одомашненные насекомые, также могут рассматриваться в качестве потенциального источника хитина и его производных [71]. Полисахариды можно получать из подмора пчел (пчел, погибших во время зимовки).
Химический состав пчел представлен в таблице 5.

Таблица 5. Характеристика подмора пчел

Содержание веществ, %

Хитин

Белок

Меланины

Влажность

Зола

10-12

50-80

20-30

8-10

3-5

Для выделения хитина в работе [72] использовались способы щелочной и ферментативной экстракции белка, а затем полученный продукт деацетилировали под действием 50%-ного раствора NaOH при 130°С в течение 1,5 ч. Полученный полимер, названный «пчелозан», хорошо растворим в кислых растворах (рН 4-6), имел степень деацетилирования 80-85% и кинематическую вязкость 0,4% раствора полимера в 1%-ной уксусной кислоте- 5-10 сПз.

25

Личинки мухи домашней обыкновенной MuscadomestikaS.

В данном способе привлекательны большая доступность и особые свойства сырья - в мягких покровах личинок мух практически нет неорганических примесей. В результате при обработке получают хитин с зольностью в 50-100 раз ниже, чем у крабового, также значительно упрощается процедура обработки.

Химический состав личинки мухи представлен в таблице 6 [73].

Таблица 6.

Химический состав личинки мухи домашней MuscadomestikaS.

Содержание, % на сухое вещество

Липиды

Зола

Белок

Хитин

15-20

6

50-55

5

Выделение хитина из предкуколки проводили традиционным кислотно-щелочным методом. При получении хитозана из мух снижали концентрацию щелочи до 35-40%, при этом выход конечного, высоко деацетилированного хитозана увеличился до 3-4%.

Во ВНИИ животноводства был разработан метод получения хитина и хитозана из умерщвленных мух, пупарий и личинок после образования биоперегноя. Обработка сырья проводилась классическим методом: деминерализация (1,5-5%) НС1, 22°С, 1,5-2 ч), депротеинирование (2-5% NaOH, 80-100°С) и деацетилирование (40-50% NaOH, 100-110°С) при отсутствии доступа воздуха к реакционной среде и воздействии ультразвуком 20-30 Гц. Из личинок получали хитозан светло-желтого, из кутикулы - светло-коричневого, из мух - черного цвета. Массовая доля основного вещества составляла 81-91%, 78-90%, 38—46%gt;, а выход 1,5-3%, 25-34%, и 5-7%, соответственно. СД варьировала от 60 до 96%) [74]. Кутикула таракана и тутового шелкопряда Bombyxrnori

В работе Zhang М. хитин и хитозан из личинки таракана и куколки тутового шелкопряда получали следующим образом [5]. На первом этапе

26

удаляли катехолы 1 н раствором НС1 при 100°С 20 минут, и далее обрабатывали 1 н раствором NaOH при 80°С в течение 24-36 ч.

Выход хитина составил 15-20%). Деацетилирование проводили 40%-ным раствором NaOH в присутствии 0,08%-ного раствора NaBH* при 110°С 4 ч. Выход хитозана на этой стадии - 70-80%. Хитин гидролизовали в 0,2 М ацетатном буфере (рН 5,0) хитиназами штамма Bacillussp. при 40°С от 15 мин до 2 ч. Эксперименты показали, что при данных условиях деацетилирования N-ацетильные группы почти полностью удаляются. Характеристика хитозана из насекомых приведена в таблице 7 [5].

Таблица 7. Свойства хитозана насекомых

Источник хитозана

Элементный состав, %

Динамическая вязкость, сПз

С

Н

N

Таракан

43,56

6,85

8,27

303

Тутовый шелкопряд

44,72

7,12

7,53

ПО

Метод получения хитина из кутикулы насекомых Muscadomesticaи Bombyxmori, описанный в работе [75], включает следующие стадии. Хитин кутикулярных оболочек насекомых измельчали до размера частиц 0,2-0,3 мм и деацетилировали 40%-ным раствором КОН при 100-110°С. Одновременно реакционную смесь обрабатывали ультразвуком 15-35 кГц в течение 3-3,5 ч. При такой обработке удалось получить хитозаны из кутикулы мухи и тутового шелкопряда с СД 70-80% и Mr) 900 кДа, а хитозан из личинки мухи сСД80-85%иМл800кДа.

В работе Struszczyk М.Н.

[76] биополимеры получали из замороженных личинок мухи Calliphoraerythrocephala(-20°С). Выполняли первое депротеинирование (2,5% NaOH, 4 ч, 22°С), при котором выход кутикулы составил 13%). Второе депротеинирование проводили при 50°С в тех же условиях, далее промывали водой, этанолом и высушивали на воздухе. Получали хитин от белого до светло-серого цвета с выходом 3,5%. Деацетилирование хитина проводили 40 и 50%-ными растворами NaOH в

27

течение 1-4 ч при температуре 100-120°С при интенсивном перемешивании. Выход хитозана составил 82%. Хитин личинок деацетилировали при более мягких условиях, чем хитин ракообразных за счет сравнительно низкой степени полимеризации. В таблице 8 приведены свойства хитина из личинки мухи в сравнении с хитином, полученным из панцирей ракообразных [76].

Таблица 8. Свойства хитина из различных источников

Образцы

Влажность, %

Мг|, кДа

сд%

Личинка С. erythrocephala

ДП-1

7,2

1020

25

ДП-2

7,4

1200

30

Антарктический криль Е. superba

2,8

990

39

Креветка P. borealis

3,4

1370

7

Например, для достижения СД 90%, хитин креветки обрабатывали 50%-ным раствором NaOH при 120°С в течение 8 ч, что приводило к снижению ММ на 81%, хитин криля - в течение 3 ч со снижением ММ на 86%. В случае хитина личинки насекомого необходимо 100°С и 3 ч для снижения ММ на 67%.

<< | >>
Источник: ОСТАНИНА ЕКАТЕРИНА СЕРГЕЕВНА. ТЕХНОЛОГИЯ ПЕРЕРАБОТКИ ВОСКОВОЙ МОЛИ, ИЗУЧЕНИЕ ПРОТИВОТУБЕРКУЛЕЗНЫХ СВОЙСТВ ХИТОЗАНА И ВЗАИМОДЕЙСТВИЯ С ЛИПОЛИТИЧЕСКИМИ ФЕРМЕНТАМИ. Диссертация на соискание учёной степени кандидата биологических наук. Щёлково-2007. 2007

Еще по теме   Пчела медоносная, ApismelliferaL.:

  1.   (Ж) Тут и преступница-пчела Для пользы общества жила.
  2.   (Г) Ну, словом, каждая пчела Обогащалась как могла, Доходы большие имея, Чем думал...
  3. Лучший маленький друг
  4. УКУС ПЧЕЛЫ
  5.   16. О том, что, если бы бог не был беспредельным, а7 он не был бы пределом желания  
  6. СТРАМБОТТИ
  7. Зооморфизмы на печатях и оттисках
  8. Урок 117
  9. Структура сознания.
  10. 29. Взаимопроникновение распространяется на все случаи заимствования